临床检验标本采集要求 临床检验样本拒收的准则 1． 盛样本的容器和/检验申请单上信息缺失或不符 1.1 样本容器上无标识或标识不清；
1.2 样本容器上标签与检验申请单不符；
1.3 临床检验申请单上未写患者姓名、检测项目和检测材料中任何一项；
1.4 检验申请单上送检项目本科未开展和/或属科研项目但未事先联系确认。
2． 样本不合要求 2.1 未使用合适的抗凝剂或样本类型不当；
2.2 送检样本容器破损、有渗漏或选择不当；
2.3 样本采集后保存不当；
2.4 患者准备状态不恰当，影响实验结果，如未空腹查血脂。
3． 发生以下情况原则上拒收样本 中度以上溶血；
中度以上脂血；
抗凝血中有凝块；
量太少等。
但因情况特殊、取材困难或感染疾病的咨询等，本科将会应客房要求进行检测，并在报告单上注明样本状态供临床参考。
样本拒收后处理：在我科拒收的样本，应及时重新采集，否则将和检验申请单一起退回。
临床检验分析前要求 一、 临床检验单要求 1．病人信息：
申请者必需清楚写病人的姓名、性别、年龄或其它有效识别身份的信息；
2．病人的病历信息 申请者必须清楚填写病人所在临床科室名称、病历号、床号、临床诊断、临床样本类型、样本采集日期和时间、申请者姓名、申请检验日期；
3． 请的检验项目：
申请者必须清楚填写检验项目名称，项目名称应规范、准确，特别是申请组合项目时，一定要与本科<检测目录>的组合内容一致，否则需填写组合项目的具体单项；
二、 标本采集前患者准备须知 1．患者状态 原则上患者应在平静、休息状态下采集样本，特别是血液样本。
激动、兴奋或恐惧时，可使血红蛋白、白细胞等增高；
剧烈运动、能量消耗、体液丢失、呼吸剧烈可以造成体内多项指标变化，如谷丙转氨酶、谷草转氨酶、乳酸脱氢酶、肌酸激酶等一过性升高，还可引起血钾、钠、钙、白蛋白、血糖等的变化。
2．患者饮食对检验结果的影响 2.1 进食后一定时间内可使血液中许多成份发生变化。因人们饮食的多样性，生理状况差异也大，而且大多数项目的参考范围是以空腹血液测定值为基础的。故建议，原则上要求早晨空腹采血(空腹12小时左右)，对进食有特殊要求的项目除外。
一顿标准餐：可使甘油三酯增高40%以上，血糖增高15%以上，进食高蛋白食物可使尿素氮、尿酸等增高，高碳水化合物食物可使血糖增高；
高脂肪食物：可使甘油三酯大幅增高，并使血液出现乳糜现象影响许多检验结果；
进食咖啡：淀粉酶、促甲状腺激素、碱性磷酸酶增高。
2.2 长期素食者低密度脂蛋白、极低密度脂蛋白，胆固醇、甘油三酯会降低。
2.3 禁食过久对检验结果的影响 补体C3、白蛋白、转铁蛋白、血糖、钾、钙、镁等浓度下降；
血胆红素、酮体、脂肪酸、甘油三酯、尿酸盐增高；
禁食刚开始时，血生长激素可升高15倍，3～4天后基本恢复正常。
2.4 咖啡因对检验结果的影响：咖啡、可乐、茶都含有咖啡因 咖啡因可使血糖微量上升，甘油三酯和皮质醇升高，胆固醇降低。
2.5 酒精对检验结果的影响：
饮酒后会使血糖立即上升和造成高甘油三酯血症；
中度酒精量可使血清肌酸肌酶、和谷草转氨酶、谷丙转氨酶升高。
2.6 抽烟对检验结果的影响 香烟中尼古丁会使血液中肾上腺素、尿中儿茶本酚胺及其代谢产物VMA升高；
生长激素对香烟特别敏感，抽烟后30分钟内浓度可升高10多倍；
吸烟者癌胚抗原、β脂蛋白、胆固醇、甘油三酯、红细胞、血红蛋白、白细胞高于不吸烟者，高密度脂蛋白低于不吸烟者。
3．药物对检验结果的影响 3.1 药理作用对检验结果的影响：
甲状腺药物：使血糖升高、胆固醇降低；
咖啡因：使血糖和胆固醇增高；
维生素C：使总胆固醇、甘油三酯、高密度脂蛋白降低；
口服避孕药：使甲状腺结合球蛋白、纤维酶原、转铁蛋白、血清铁和甘油三酯升高、白蛋白和血清锌降低；
某些药物能够造成肝、肾功能损害，引起相关指标的变化。
3.2 对检验项目的测定方法产生影响：
对于用比色法检测的项目，某些药物的物理特性比如颜色会影响比色；
药物参与检测时的化学反应，如有还原性的药物对于利用氧化还原法测定项目会有影响；
某些药物可以抑制酶的活性，对于测定酶活性的项目会使结果降低。
4．标本本身对检验结果的影响 4.1 标本溶血：溶血可能是有某些疾病引起，但主要是在采血过程中或样本处置不当引起。
光学干扰，比色时若用到胆红素的吸收光谱区会产生分析误差；
红细胞内的某些物质与血清或血浆中的含量相差悬殊，如钾、镁、磷、谷丙转氨酶、谷草转氨酶、乳酸脱氢酶、血清铁等；
胆红素中的蛋白质使血清总蛋白和白蛋白升高。
注一：中度或重度溶血必须重新采集标本 注二：标本溶血的常见原因：
止血带施压时间太长；
穿刺部位皮肤有酒精残留；
针头、针筒或血液容器内有污染或水气；
使用的针头孔径太小；
针筒内的血液由针头排到容器中；
抽血时太快或用力太大；
血液与抗凝剂混合时剧烈振荡；
血液没有完全凝固就离心；
4.2 脂血标本：
脂血造成的浑浊会在比色测定时引起光线散射，导致吸光值假性增高；
脂血会造成电解质检测错误；
抽血前食入富含脂肪的食物；
空腹患者有脂血现象，属于病理因素：甘油三酯过高血浆或血清呈浑浊状；
胆固醇含量高，血清或血浆外观没有变化；
有乳糜微粒会在血清液面浮上一层奶油状物质。
三、 样本采集 1．标本采集前准备 1.1 根据项目要求或医生的交待嘱咐病人作好采集标本前的准备工作，并告知相关注意事项；
1.2 了解各种项目的采集要求，并作好充分的准备；
1.3 按规定选用合适的容器并在明显位置注明标识(如条形码、病人姓名、送检科室、住院号等资料)；
1.4 标本采集前应严格查对检验申请单信息和容器上内容是否一致。有些标本采集后应在申请单上标注采集时间、体位等；
1.5 采集抗凝血标本时，应选择合适的抗凝剂，不要随意更换成其他抗凝剂。抗凝剂与血液的量必须准确。抽血后立即轻轻颠倒混匀，避免血液凝固；
1.6 严格掌握采集标本电动机，如避免在输液臂的同侧采血，有的项目测定应注意其分泌的节律性和周期性变化；
1.7 要求病人自己留取的标本应该详细交待留取方法和注意事项。
2．标本采集方法 2.1 准备试管：取合适数量和规格的真空采血管备用；
2.2 选择静脉：患者取坐位，前臂水平伸直置于桌面枕垫上。暴露穿刺部位，选择容易固定，明显可见的肘部静脉；
2.3 扎止血带：在采血部位上端扎止血带，并嘱患者反复握拳头，使静脉充盈暴露，便于穿刺；
2.4 消毒：先用复合碘消毒棉签自静脉穿刺处从内向外，顺时针方向消毒皮肤；
2.5 穿刺：取下一次性针头无菌帽，以左手拇指固定静脉穿刺部位端，右手拇指和中指握针头沿静脉使针头与皮肤成30度角斜行快速入皮肤，然后以5度角向前突破静脉壁进入静脉腔。见回血后，将针头顺势插入少许，以防止采血针头滑出，但不可用力探刺，以免造成血肿；
2.6 抽血：将针头另一端插入真空采血管，至所需血量后，立即去掉止血带，用消毒棉签压住针孔，请患者松拳，迅速拔出针头。嘱患者继续按压针孔数分钟以防出血；
2.7 混匀：如果用的是抗凝管，则轻轻颠倒混匀，切忌振荡试管。
3．尿液标本的采集 尿液标本种类的选择和收集取决于临床医师的送检目的、病人的状况和试验的要求。理想情况下，为了达到筛查、检出分析物和有意义有形成份的目的，应收集浓缩尿液。尿液标本的种类如下：
3.1 晨尿：清晨起床后，在未进早餐和做其它运动前排泄的尿液，又称为首次晨尿。住院病人最适宜收集此类标本，但在采集前一天应提供收集容器和书面收集说明，如外阴、生殖器清洁方法，留中段清洁尿等。若采集后2小时不能进行分析的，可采取适当的防腐措施。晨尿常用于筛查、直立性蛋白尿检查和细胞学研究。
3.2 随机尿：即随时排泄，无需患者做任何准备的尿液，适用于常规及急诊筛查，但是，患者如摄入大量液体和剧烈运动后将直接影响尿液成分，从而不能准确反映患者疾病状况。
3.3 计时尿：收集一段时间内的尿液标本。准确的计时和规范的说明是确保计时尿结果可靠的重要前提，根据检测项目的不同，添加适当的防腐剂。24小时尿标本收集方法如下：
告知病人标本收集的具体步骤，尽可能提供书面说明；
在开始收集标本的第一天(如晨8:00)，病人排空膀胱中的尿液，弃去该部分尿液。将此后连续24小时的尿液收集于盛尿容器内；
在结束收集标本的第二天(如晨8:00)，病人排空膀胱中的尿液，收集于盛尿容器内；
送到实验室前，充分混匀全部标本，准确测量并记录尿总量；
取出一定量尿液用于实验，弃去剩余尿液。
3.4 尿液标本收集相关注意事项：
应留取新鲜尿，以清晨第一次尿为宜。急诊病人可随时留取。收集计时尿液标本时应告知病人时间段的起点和终点；
使用清洁有盖容器(一次性容器为佳)，透明且不与尿液发生反应的惰性材料制成。容器不可重复使用。运送容器具有安全稳妥的密封装置，其密封装置易于操作和开启；
尿液标本应避免经血、白带、精液、粪便等混入。此外，还应注意避免烟灰、糖纸等异物混入；
标本留取后，应及时送检，以免细菌繁殖、细胞溶解等；
尿胆红素和尿胆原等化学物质可因光分解或氧化而减弱。标本送检时应避光。
3.5 尿液防腐与保存：标本收集2小时内无法进行尿液分析，或尿液中所要分析的成分不稳定，标本可加入特定的化学防腐剂，常用尿液防腐方法。
①冷藏 不干扰常规筛查，放在4℃冰箱可保存6小时，在24小时内可抑制细菌生长。
主要检测：电解质、肌酐、葡萄糖、总蛋白、白蛋白、重金属、药物筛查、促卵泡激素、雌三醇等。
②甲醛 具有还原性，不适合尿糖等化学成份检查。
主要检测：管型、细胞检查，用法：每100mL尿加入400g/L的甲醛0.5mL。
③甲苯 主要检测：尿糖、尿蛋白的防腐，用法：每100mL尿加入甲苯0.5mL。
④硼酸 保护蛋白质和有形成份，在24小时内可抑制细菌生长。有尿酸盐沉淀。干扰常规筛查的PH。
主要检测：蛋白质(白蛋白、氨基酸等)、尿酸、5-羟吲哚乙酸、羟脯氨酸、皮质醇、雌激素、类固醇等检查。
用法：每L尿中约加10g。
⑤盐酸 不能用于常规筛查，破坏有形成份，沉淀溶质，杀菌。
主要检测：钙、磷酸盐、δ-氨基乙酰丙酸、草酸盐、尿17酮类固醇、儿茶酚胺等。
用法：每L尿中加10mL浓盐酸。
⑥氟化钠 能防止糖酵解，不能用于常规筛查。
主要检测：尿葡萄糖。
⑦碳酸钠 保护卟啉和尿胆原，不能用于常规筛查。
主要检测：卟啉和尿胆原。
用法：24小时尿中加碳酸钠4g。
⑧麝香草酚 保护有形成份、干扰蛋白沉淀试验、抑制细菌和霉菌。
主要检测：有形成份。
用法：每100mL加入量<0.1g。
⑨冰醋酸 主要检测：24小时尿醛固酮。
用法：每24小时尿加入约5～10mL。
4．痰液标本采集 4.1 痰液的一般检查应收集新鲜痰，病人起床后刷牙，漱口(用3%H2O2及清水3次)，用力咳出气管深处真正呼吸道分泌物，而勿混入唾液及鼻咽分泌物；
4.2 幼儿痰液收集困难时，可用消毒棉拭纸刺激喉部反射，用棉拭子采取标本；
4.3 痰液标本收集容器须加盖，痰液勿污染容器外(用不吸水容器盛留)。
5．粪便标本采集 5.1 收集粪便标本的方法因检查目的不同而有差别，一般检验留取指头大小 (约5g)新鲜粪便即可，放入干燥、清洁、无吸水性的有盖容器内送检。容器最好用内层涂脂的硬纸盒，便于检查后焚毁；
5.2 血吸虫毛蚴孵化则留新鲜粪便不少于3g。细菌检查的粪便标本应收集于灭菌封口的容器内，勿混入消毒剂及其他化学药品，并立即送检检查；
5.3 检查蛲虫卵需要用软粘透明纸拭子，在清晨排便前由肛门四周拭取标本，也可用棉拭子拭取，但均须立即镜检；
5.4 检查寄生虫及虫卵计数，可用清洁、无尿污染的便盆收集24小时粪便送检；
5.5 隐血试验，应嘱患者于收集标本前3天前起禁食动物性食物，连续检查3天，并取外表及内层粪便。收集标本后须迅速进行检测，以免因长时间放置使隐血反应的敏感度降低；
5.6粪胆原定量检查应收集3天的粪便，混合称量，从其中取出约20g送检。查胆汁成份的粪便不应在室温中长时间放置，以免阳性率减低；
5.7细菌检验用标本应全部用无菌操作收集。
收集容器须加盖，勿污染容器外(用不吸水容器盛留)，立即送检。
6．体液标本采集 6.1 脑脊液：标本收集后应立即送检，一般不超过1小时。收到标本后应立即检验，久置后可致细胞破坏，影响细胞计数及分类检查；
葡萄糖含量降低；
病原菌破坏或溶解。细胞计数应避免标本凝固，遇高蛋白标本时，可用EDTA抗凝。
6.2 浆膜腔积液：穿刺取得的标本为防止细胞变性、出现凝块或细菌破坏溶解等，送检及检查必须及时；
为防止凝固，最好加入EDTA抗凝，每0.1mL可抗凝6mL积液；
PH测定应用肝素抗凝专用采样器。
6.3 滑膜液：应用消毒注射器，正常时滑膜液量甚少，病理时则可多达3～10mL，因检查项目不同、容器不同，故应事先准备有关标本容器，微生物培养应置于灭菌消毒试管，显微镜镜检应用肝素抗凝标本，每mL约用肝素钠25单位(不可采用肝素锂、草酸盐或EDTA干粉，以免人为形成晶体，干扰显微镜检查)，收集后立即送检。
6.4 精液标本：
①在3个月内检查2次至数次，2次之间间隔应>7天，但不超过3周；
②采样前至少禁欲3天，但不超过7天；
③采样后1小时内送检；
④用清洁干燥广口塑料或玻璃小瓶收集精液，不宜采用避孕套内的精液；
⑤应将射清清液全部送检；
⑥传送时温度应在20～40℃；
⑦和所有体液一样，精液也必须按照潜在生物危害物质处理，因为精液内可能含有肝炎病毒、人类免疫缺陷病毒和疱疹病毒等。
7．微生物学检验标本 7.1 标本采集、运送这、验收和处理注意事项 ①标本采集：
A. 申请单必须清楚(姓名、性别、年龄、临床诊断、标本来源、采集时间、检查项目、抗生素应用情况等)，以便实验室合理选用培养基。
B. 尽量在抗生素应用前采集标本。
C. 标本采集应严格执行无菌操作。
D. 采集标本的容器必须经灭菌处理或使用一次性无菌专用容器。
②标本运送 标本采集后尽快送微生物室。
③标本验收 A. 实验室只能接收和处理合格标本。
B. 实验室对不合格标本退回时，须注明原因，并及时与临床联系。
7.2 微生物检验标本采集和处理 ⑴尿液标本采集和处理：通常留取晨起第一次心潮澎湃 液，及时送检，并保证2小时内接种，不能及时送检时，标本应置冰箱保存，并于8小时内送检。怀疑沙门氏菌感染时，应于发病2周左右采集标本；
怀疑钩端螺旋体感染时，应于发病后2周左右采集标本。常用的标本采集方法如下：
A. 中段尿采集法：成年男性和女性分别用肥皂水清洗尿道口和外阴部，再用灭菌水冲洗尿道口，然后排尿弃去前段尿液，于带盖的无菌试管中留取中段尿液5～10mL。
B. 尿尿法：用导尿法取5～10mL尿液于无菌试管中，长期留置导尿管者应更换导尿管留尿；
留置导尿时，用无菌消毒法消毒导尿管外部及导管口，用无菌注射器通过导尿管抽取尿液送检，不可采集尿液收集袋中的尿液送检。
C. 其它方法：膀胱穿刺或肾盂尿采集法须由临床医师采集。
⑵粪便标本采集和处理：
A. 采集时间：腹泻患者处于急性期，尽量在用药前采集；
怀疑伤寒患者在发病前两周以后采集；
怀疑霍乱时应立即采集送检。
B. 采集方法：一般患者，取新鲜粪便的粘液、脓血或絮状物等有意义成份2～3g或1～3mL，盛无菌容器内送检；
难以获得粪便或排便困难的患者和婴幼儿，可用直肠拭子采集，再插入灭菌试管中送检。
⑶痰及下呼吸道标本采集和处理：
A. 自然咳痰法：晨痰为佳；
先嗽口，清洁牙齿和口腔；
再用力咳出呼吸道深部的痰；
痰量不得少1mL；
咳痰困难者可先做雾化处理。
B. 小儿取痰法：用弯压舌向后压舌，将拭子深入咽部，小儿因压舌板刺激引起咳嗽，喷出的肺或气管分泌物粘在拭子上送检。
C. 支气管镜、支气管穿刺、支气管肺泡灌洗等采集法：，由临床医师实施。
⑷血液及骨髓培养标本：
A. 抗生素治疗前，严格无菌静脉采血3～5mL(儿童1～4mL)；
骨髓1～2mL。
B. 无菌注入专用培养瓶中送检。
C. 如已用抗生素不能停用时，可在48小时内分别于下次抗生素使用前，多次采集血液标本送检。
D. 疑为心内膜炎时，为提高阳性检出率，可酌情不同部位、不同时间多次采血送检。
⑸脑脊液培养标本：
A. 怀疑脑膜炎时应立即采集脑脊液，最好在抗生素使用前采集。
B. 无菌腰穿采集脑脊液1～2mL，立即送检。
⑹穿刺液培养标本：
A. 包括胸水、腹水、心包液、关节液、鞘膜液等。
B. 在抗生素使用前采集或在停用抗生素2～3天后采集。
无菌穿刺采集，可在无菌容器中加入适量灭菌肝素。
⑺胃液及胆汁培养：
A. 采集方法：抽取空腹胃液5 mL，置无菌管内送检；
胆汁培养标本由十二指肠引流法、胆囊穿刺法或手术中留取胆汁5 mL，置无菌管内送检。
B. 标本采集后必须立即送检。
⑻脓汁和病灶分泌物培养：
A. 标本采集前，先对病灶周围消毒，然后用无菌法采取脓汁或病灶分泌物和组织。
B. 标本采集后立即置无菌管内送检。
⑼眼、耳、鼻、咽拭子分泌物培养标本：
A. 用无菌拭子常规采集标本。
B. 标本采集过程中应注意避免被粘膜上正常菌群污染。
C. 标本采集后连同拭子一起置无菌管内送检。
⑽泌尿生殖道培养标本：
A. 尿道分泌物：清洗尿道后采取尿道溢出的脓性分泌物，或用无菌拭子插入尿道2～4 mL处轻轻转动后取出，置无菌试管中立即送检。
B. 阴道、宫颈分泌物：通过阴道扩张器，用灭菌拭子采取阴道口或宫颈管1～2 mL处分泌物，置无菌试管中送检。
C. 前列腺液：清洗尿道、膀胱后用前列腺按摩法采集前列腺液于无菌试管中，立即送检。
D. 精液：受检者应5天以上未排精，清洗尿道后用手淫法或体外排精法，射精于无菌管中立即送检。
E. 溃疡分泌物：灭菌生理盐水清洗患处，用无菌拭子取其边缘或基底部的分泌物，置无菌试管中立即送检。
⑾烧伤感染培养标本：
烧伤12小时后用无菌棉拭子采集标本：要注意从多个创面取样；
烧伤严重感染时易发生败血症，创面取样的同时应采集血样做血培养。
⑿真菌感染培养标本：
浅部真菌感染标本采集：皮癣者常规消毒皮肤，从皮损边缘刮取鳞屑，置无菌平皿中送检；
皮肤溃疡则采集皮损周围脓汁或组织；
毛发则采集其根部折断处，至少5～6根送检；
指(趾)甲；
消毒指(趾)甲并去掉其表面部分，取可疑病变部分，用刀片修成小薄片5～6片，置无菌容器中送检。
深部真菌感染标本采集：
血液：无菌采集血3～5 mL，注入血培养瓶中，立即送检；
如不能立刻送检时血培养瓶应放室温，但不可超过8小时。
及脊液：采样量不少于3 mL，分别注入两支无菌试管中送检(一支做真菌培养和墨汁染色，另一支做普通培养)。
呼吸道及泌尿生殖道标本：采集方法同普通培养。
⒀厌氧菌感染培养标本：
标本采集：严格执行无菌操作，避免标本污染和与空气接触；
用注射器抽取胸水、腹水、心包液、关节液、胆汁、脑脊液或无菌手术抽取脓液；
抽出液体标本后，要尽快排除注射器内的空气。
标本运送：标本采集后不得冰箱储存，必须尽快(半小时内)送检；
标本运送可采用注射器(已驱氧)或含运送培养基的无氧小瓶以及厌氧罐。
⒁特殊项目的标本采集要求 A. 糖耐量试验：
①病人准备：试验前3日，每日食物总糖含量不低于150g，维持正常活动，影响试验的药物(如：咖啡因、口服避孕药、水杨酸盐等)应在3日前停用，试验前病人应10～16小时不进食。
②标本采集：临床上常用方法是清晨抽空腹血后，口服75g无水葡萄糖，再于给糖后0.5、1、1.5、2小时各采血1次，每次采集2mL，尽快分离血清。
B. 人乳头瘤病毒DNA(HPV-DNA)分型检测：
①病人准备：3天内不能做阴道冲洗或使用阴道内药物，24小时内不能有性生活，非月经期采样检测。
②标本采集：放置阴道扩张器，用专用取样刷置于子宫颈口与粘膜交界处逆时针转三圈，停留10秒钟；
③将取样刷放于专用试管中，在切口处折断多余部分；
④拧紧盖子送检。尽量避免保存液在取样过程中溢出，否则样本量不够无法检测。
标本保存：4℃可保存3周，-20℃可保存半年。
C. 高血压项目：
①病人准备：β-阻断剂、血管扩张药、利尿剂及甾体激素、甘草等影响体内肾素水平，一般要在停药后3周测定。不适合停药的病人改服胍乙啶等的影响PRA较小的降压药。钠摄入量影响机体PRA水平，故病人测定PRA前3天应适当减少盐报入量，最好同时测定取血前24小时的尿钠含量，以供分析PRA结果时参考。
②标本采集：肘静脉取血5mL，迅速注入放在水浴冷却的酶抑制剂的专用抗凝管中，摇匀，即刻现放回冰水浴中冷却，待离心时取出。1000rpm离心5分钟(最好4℃离心)分离血浆。此操作应在15分钟内完成。(外送时，取2mL血浆送检)。
③标本保存：低温冰箱保存(-20℃以下)，可保存2个月。
④注意事项：卧位血是指病人早晨醒来未下床活动前采集的血标本：立位血是指病人早晨下床活动3小时后采集的血标本。
标本未及时分离血浆、反复冻融、溶血、保存不当、使用过期抗凝剂均可影响结果。
四、标本送出前的处理和保存 1．标本的交接检查：本科工作人员与送检者当场交接样本，履行交接程序。不合格的样本当场拒收，对有疑义的样本，与临床协商后处理。
样本上条码与检验申请单上条码是否一致 样本是否溶血 抗凝血有无凝块 检验申请单填写是否完整 血液样本有无脂血 样本量是否符合要求 样本使用容器是否正确(是否抗凝、所用抗凝剂种类，特殊项目是否使用专用容器或采集管)。
2．样本离心 绝大多数血液中成份在不分离血细胞的情况下能够在24小时内保持稳定，但外送检验项目必须分离血清或血浆后送检。
溶血对一些项目影响很大，发生中度以上溶血的下列项目不能检验：钾、钠、氯、钙、镁、磷、谷草转氨酶、谷丙转氨酶、胰岛素、C肽、肌酸激酶、神经元特异性烯醇化酶、碱性磷酸酶、乳酸脱氢酶、叶酸、血常规等。
注：因许多成份在红细胞和血清/血浆间浓度有差异，有的差异很大，样本在运输、储存过程中，血细胞代谢、微生物降解等会影响标本质量，另如标本在运输过程中处理不慎(颠簸等)易引起溶血。
3．样本保存：不能及时送检的样本，一般情况下应放冰箱冷藏，但部分项目要室温保存。. 4．样本密封：为保护样本不挥发、污染、溢出和生物安全考虑，盛样本的容器应密封，所有样本都应按照生物安全的要求谨慎处理。
建议：对于要外送检验的项目，将血液样本分离血清/血浆后送检(需要用全血检测的项目除外)。
